ORIENTAÇÕES PARA EXAMES

Somos conscientes sobre as dificuldades encontradas na realização de coleta de sangue e por isso possuímos critérios flexíveis para rejeição de amostras, sendo que na maioria das vezes o exame é realizado, porém com ressalvas no laudo. Também realizamos uma avaliação criteriosa de amostras insuficientes para evitar rejeição da amostra e recoleta.

Solicitamos atenção especial no preenchimento da requisição de exames, a fim de evitar atrasos na entrega dos resultados. Alguns exames necessitam de informações como: data de nascimento ou idade aproximada, presença de problemas de saúde (paciente renal, cardíaco, piometra, ...), medicamentos em uso (corticoides, ...) e outros dados que julgue necessário para o caso. Escrever no verso da requisição as informações mais importantes sobre o paciente e o caso clínico.

Lembramos que as orientações aos tutores, prévias aos exames (jejum, uso de antibióticos, ...), método de coleta, armazenamento da amostra e sua correta identificação são de responsabilidade do clínico e que erros nestas etapas podem interferir nos resultados dos exames. Em caso de dúvidas entre em contato conosco pelos telefones (41) 3077-1726 / (41) 3114-2221, WhatsApp (41) 99794-7661 ou pelo e-mail contato@vivittapet.com.br que teremos um enorme prazer em ajudá-lo.

 

Hemograma: Necessário jejum de 8 horas.

Colesterol Total e Triglicérides: Jejum obrigatório de 12 horas.

Demais exames: Desejável jejum de 8 horas.

Hematologia: Colher por punção intravenosa de 2 a 4 mL de sangue (verifique atentamente a graduação do tubo utilizado), retirar a agulha e transferir o volume para um tubo com EDTA (tampa roxa). Homogeneizar delicadamente por 30 segundos. Para a hematologia de aves, répteis e peixes, indica-se a utilização de tubo com Heparina.

Amostra sem Anticoagulante: Indicado para exames bioquímicos, sorológicos e hormonais. Colher por punção intravenosa de 2 a 4 mL de sangue (dependendo da quantidade de exames solicitados), retirar a agulha e transferir o volume para um tubo com ativador de coágulo ou tubo seco (tampa vermelha ou amarela). Depois de colhido, o material deve ser mantido em geladeira até sua manipulação (2º – 8ºC). Para dosagem de glicose e ácido lático, deve-se utilizar o tubo com Fluoreto (tampa cinza).

- Colher a amostra em frasco fornecido pelo laboratório ou comprado em farmácia.
- Colocar as fezes no pote sem misturar com urina. Evitar o envio de fezes misturadas com outros materiais (por exemplo: grama, areia...).
- Coletar uma porção de fezes de modo que se complete meio frasco.
- Identificar o frasco com o nome do paciente e nome do proprietário e encaminhar ao laboratório em seguida;
- Caso não seja possível o envio da amostra ao laboratório rapidamente, embrulhar o frasco em papel e conservar na geladeira até a hora de entrega ao laboratório;
- É interessante coletar 3 amostras de fezes de cada animal, colhidas em dias alternados, pois os parasitos são eliminados de forma intermitente nas fezes.

Urinálise
- A coleta da urina poderá ser realizada por micção espontânea, cateterismo (sonda) ou, preferencialmente, por cistocentese. Colher em frasco fornecido pelo Laboratório ou comprado em farmácia, e em caso de coleta realizada por cistocentese enviar na própria seringa de coleta. Outros tipos de frascos não serão aceitos;
- Enviar ao Vivitta Pet, no máximo, 2 horas após a coleta.

Urocultura
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É aconselhável que a coleta de urina para cultura seja realizada antes do uso de antimicrobianos;
- Colher em frasco fornecido pelo Laboratório ou comprado em farmácia, e em caso de coleta realizada por cistocentese enviar na própria seringa de coleta. Outros tipos de frascos não serão aceitos;
- Identificar o frasco com nome do paciente e nome do proprietário e encaminhar ao laboratório o mais rápido possível. Caso não seja possível, enviar no máximo 02 horas sem refrigeração ou 04 horas após refrigeração.

Para suspeitas de demodiciose, o raspado deve ser profundo para conseguir reunir ácaros presentes nos folículos pilosos. Deve ser selecionada uma área lesionada da pele, pressioná-la entre os dedos indicador e polegar e realizar o raspado com a lâmina de bisturi até que ocorra extravasamento sanguíneo evidente. Para suspeitas de escabiose ou sarna notoédrica, o raspado deve ser profundo, também, porém de maior extensão, procurando abranger "caspas" e crostas presentes. O material colhido deve ser posto em lâmina de microscopia com algumas gotas de óleo mineral, coberto com outra lâmina e enviada ao laboratório.

Indica-se a coleta e envio do material em 2 tubos, com anticoagulante e sem anticoagulante. A amostra deve ser mantida refrigerada e encaminhada para a análise no mesmo dia, se possível.

Enviar em até 30 minutos ao Vivitta Pet ou coletar em 2 tubos de vidro, um sem aditivo e outro com uma gota de formalina 10% para cada ml e enviar em até 12 horas.

- Condições de coleta: Não estar em uso de antibióticos por no mínimo 7 dias. Colher o material o mais diretamente possível da lesão. Uma coleta mal feita resulta no insucesso da pesquisa do real agente etiológico da doença. Quando há contaminação na coleta, por exemplo, com microorganismos da flora normal, pode gerar uma terapia incorreta tratando-se o germe contaminante e não o causador da doença.

- Lesões profundas: realizar rigorosa antissepsia da região externa e puncionar com seringa e agulha.

- Fístulas e abscessos abertos: realizar rigorosa antissepsia da região externa e espremer o material da profundidade, colhendo a secreção com “swab” ou seringa.

- Ouvidos: realizar rigorosa antissepsia da região externa e colher com “swab”.

- Vagina / Útero: realizar rigorosa antissepsia da região externa e colher com “swab”.

- Urina: Deve ser coletada por cistocentese para evitar contaminação da amostra. Pode ser mantida na seringa sob refrigeração e deverá ser enviada em no máximo 12h para a análise pois o pH da urina pode inviabilizar o crescimento bacteriano in vitro.

- Peça cirúrgica: coletar uma pequena amostra e enviar imediatamente ao Vivitta Pet em um frasco estéril com solução de soro fisiológico.

- Para o exame histopatológico convencional: o fixador universal utilizado é a solução aquosa de formalina, formol a 10% (1 parte de formol para 9 partes de água). Deve-se utilizar o volume do fixador no mínimo 3 vezes maior que o volume da peça a ser fixada. Fragmentos grandes devem, pelo menos, serem cortados em fatias para a entrada do formol.

- Nunca amasse, esmague ou comprima os fragmentos biopsiados. Use sempre um frasco de boca larga ou saco plástico para o acondicionamento de seu material e lembre-se de ter sempre formol à mão (verifique seu estoque antes de começar uma cirurgia).

- Para o envio, deve-se assegurar que o material não esteja vazando. Para maior segurança recomenda-se acondicionar os frascos em saco plástico bem vedado.

- Pode-se manter o material em fixador (formol 10%) por 24 – 48 horas e após este período o material pode ser enviado em uma embalagem plástica podendo conter uma gaze embebida em formol 10%. Desta maneira diminuem os riscos de vazamento de formol.

- Aspirar material representativo (nódulos, linfonodos, punção guiada por U.S.) com seringa de 10 mL e agulha 25 x 0,8 mm para fornecer a pressão negativa adequada.

- Realizar movimentos em leque para uma melhor amostragem do material.

- Em casos de material sanguinolento, somente entrar com a agulha no local sem aspirar e fazer movimento de leque, para evitar contaminação da amostra com sangue.

- Após a aspiração (ou somente entrar com a agulha no local sem aspirar), remova a agulha, encha a seringa de ar e espirre o conteúdo em uma lâmina e deslize sobre outra, sem comprimir/pressionar para não ocorrer artefatos de esmagamento.

- Não realizar esfregaços muito espessos.

- Fixar as lâminas ao ar ou em álcool 70% por 10 minutos.

- Não necessita refrigeração.

- Enviar acondicionadas em frasco porta-lâminas com histórico detalhado, técnica de colheita e de fixação.

As amostras devem ser coletadas assepticamente, acondicionadas em coletores universais estéreis e mantidas a temperatura ambiente. Em caso de uso de antifúngicos tópicos, deve-se aguardar 15 dias para realizar a coleta e em tratamento via oral, deve-se aguardar 30 dias. O animal deve estar sem banho pelo menos 7 dias.

- Amostras de pelos devem ser colidas da borda da lesão por avulsão para amostragem da raiz do folículo piloso.
- Em casos suspeitas de rinite, uveítes e osteomielites fúngicas, as amostras mais indicadas para a realização do cultivo são os fragmentos de biópsias. O material deve ser encaminhado em tubo seco com um pouco de solução fisiológica para evitar o ressecamento do material.